一文带你学会糖原pas染色试剂盒的使用方法
更新时间:2023-02-18 点击次数:1119次
1、常规固定,常采用10%的福尔马林,常规脱水包埋。
2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
3、再用蒸馏水洗2次。
4、用试剂(A)氧化剂室温(25-30℃)处理10~20min。
5、自来水冲洗1次,再用蒸馏水浸洗2次。
6、样本放入试剂(B)Schiff试剂中,置于室温(25-30℃)染色10~20min。
7、自来水冲洗10min(染色较深的切片可缩短时间)。
8、样本置于Mayer’s苏木素染色液中,染细胞核1~2min。
9、酸性分化液分化2~5s(选做)。
10、自来水冲洗10~15min使细胞核返蓝。
11、梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封。
糖原pas染色试剂盒的使用注意事项:
1、切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
2、氧化剂氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18~22℃最佳。
3、氧化剂和Schiff试剂应置于4℃密闭保存,使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前,最好提前30min取出恢复到室温后再使用,避光暗处使用。
4、酸性分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5、在氧化剂和Schiff试剂中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。